纯化细胞色素C氧化酶活性测定试剂盒产品说明书

主要用途 

    纯化细胞色素C氧化酶活性测定试剂是一种旨在通过细胞色素C氧化酶反应系统中还原性细胞色素C氧化后吸光峰值的降低，即采用比色法测定样品中酶活性的经典的技术方法。该技术由大师级科学家精心研制、成功实验证明的。其适用于来自各种细胞或组织（动物、人体、植物、昆虫等）的*或部分纯化的细胞色素C氧化酶的活性检测。产品严格无菌，即到即用，操作简捷，性能稳定。

技术背景

    细胞色素C氧化酶（Cytochrome c oxidase）存在于真核生物的细胞线粒体上，主要通过氧化磷酸化为细胞提供能量。基于底物还原型细胞色素C（reduced cytochrome c），受到细胞色素C氧化酶的催化，转化为氧化型细胞色素C（oxidized cytochrome c），在分光光度仪下，出现吸光值的变化（550nm 波长），由此定量测定细胞色素C氧化酶的活性。细胞色素C氧化酶反应系统为：

产品内容

缓冲液（Reagent A）         毫升

反应液（Reagent B）         毫升

稀释液（Reagent C）           毫升

稳定液（Reagent D）           微升

产品说明书               1份

保存方式

缓冲液（Reagent A）和稀释液（Reagent C）保存在4℃冰箱里，其余的保存在－20℃冰箱里；反应液（Reagent B）避免光照；有效保证6月

用户自备

1.5毫升离心管：用于反应液配制的容器

比色皿：用于比色的容器

分光光度仪：用于比色分析

实验步骤

实验开始前，将－20℃冰箱里的试剂盒中的反应液（Reagent B）置入冰槽里融化，然后移出100微升到新的1.5毫升离心管，加入xx微升稳定液（Reagent D），轻柔混匀后，室温下避光静置至少15分钟（可见颜色变化），置于冰槽里，标记为反应工作液（注意：参见注意事项4），放在暗室里备用。然后进行下列操作。

一、 测读准备

1． 准备好纯化的细胞色素C氧化酶的蛋白样品，置于冰槽里融化 

2． 设定好分光光度仪：温度25℃，波长550nm，间隔10秒，测读7次（共60秒），并置零或设置0秒和60秒各测读1次

二、 背景对照测定 

1． 移取xx微升缓冲液（Reagent A）到新的1毫升比色皿

2． 加入xx微升稀释液（Reagent C）

3． 上下倾倒数次，混匀

4． 室温下孵育2分钟

5． 放进分光光度仪，置零

6． 取出比色皿，加入xx微升含有反应液（Reagent B）和稳定液（Reagent D）的反应工作液

7． 上下倾倒数次，混匀

8． 即刻放进分光光度仪检测，此为背景空对照（0秒读数－60秒读数），

三、 样品测定

1． 移取xx微升缓冲液（Reagent A）到新的比色皿

2． 加入100微升待测样品（注意：建议总量2微克酶蛋白，且样品需澄清）

3． 上下倾倒数次，混匀

4． 室温下孵育2分钟

5． 放进分光光度仪，置零

6． 取出比色皿，加入xx微升含有反应液（Reagent B）和稳定液（Reagent D）的反应工作液

7． 即刻上下倾倒数次，混匀（限定在3秒之内）

8． 即刻放进分光光度仪检测，此为样品读数（0秒读数－60秒读数）

四、 计算样品活性 

注意事项

1． 本产品为20次操作，包括背景对照

2． 操作时，须戴手套

3． 样品制备中忌用DTT和巯基乙醇等处理

4． 每增加1个样品，增加反应工作液为：反应液（Reagent B）50微升＋稳定液（Reagent D）1.5微升，以此类推。配制反应工作液时，须根据样本数量配制实际工作液容量。

5． 系统操作过程中，背景测定只需1次

6． 分光光度计波长严格设置在550nm，误差10nm将不产生信号

7． 加样后3秒内进行比色测定

8． 比色测定后，比色皿须清洗*

9． 背景空对照0秒读数通常0.2至0.8为理想状态

10． 背景空对照的正常读数差值（0秒－60秒）通常为0.001至0.005（正负即可）

11． 样品0秒读数通常和背景空对照0秒读数一致

12． 样本测定60秒读数低于0秒读数表明具有酶活性

13． 酶活性单位浓度定义：在25℃室温下，pH 7.0的情况下，每单位酶在单位时间内（每分钟）氧化1微摩尔的细胞色素C

14． 建议待测样本蛋白浓度为2微克/100微升；如果样本酶活性过低或过高，即60秒读数不变或为零，则可以增加或降低样本量（本公司提供 Bradford蛋白质浓度定量试剂盒GMS30030.1）

15． 本公司提供系列细胞色素相关试剂产品

质量标准

1． 本产品经鉴定性能稳定

2． 本产品经鉴定检测敏感