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Technical articles
更新时间：2026-05-14
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主要用途
细胞SGK1激酶活性光度法定量检测试剂是一种旨在通过多肽底物，在敏感性抑制剂存在与否的情况下，受到SGK1磷酸化后，进而由丙酮酸激酶和乳酸脱氢酶连续循环法反应系统，测定产生ADP过程中，伴随的还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸（NADH）的氧化反应， 即采用光度法测定其氧化后峰值的变化，以分析细胞裂解样品中SGK1活性的而经典的技术方法。该技术经过精心研制、成功实验证明的。其适用于各种细胞裂解萃取液样品（动物、人体）、部分或纯化酶样品中SGK1激酶的定量检测，以及抑制剂和激活剂的筛选。产品严格无菌，即到即用，操作简捷，性能稳定，高度敏感。
产品内容
清理液（Reagent A） 毫升
裂解液（Reagent B） 毫升
缓冲液（Reagent C） 毫升
酶促液（Reagent D） 毫升
反应液（Reagent E） 毫升
底物液（Reagent F） 毫升
阴性液（Reagent G） 微升
专性液（Reagent H） 微升
产品说明书 1份
保存方式
保存清理液（Reagent A）在4℃冰箱里；其余的保存在－20℃冰箱里，严格避免光照和反复冻融；有效保证6月
用户自备
SGK1激酶：用于抑制剂筛选
1.5毫升离心管：用于样品操作和保存的容器
15毫升锥形离心管：用于样品处理的容器
细胞刮脱棒：用于贴壁细胞脱离
（微型）台式离心机：用于细胞预处理
200微升1厘米光径比色皿或96孔板：用于光度分析操作的容器
分光光度仪或酶标仪：用于样品光度分析
实验步骤
一、 待测样品准备
1． 准备好75cm2细胞培养瓶或100mm细胞培养皿的待测培养细胞（1至5 X 107细胞）
2． 小心加入xx毫升清理液（Reagent A），覆盖生长表面
3． 小心抽去清理液
4． 使用细胞刮脱棒轻柔刮脱细胞（注意：避免使用胰酶消化）
5． 加入xx毫升清理液（Reagent A），混匀细胞
6． 移入到预冷的15毫升锥形离心管（注意：悬浮细胞从这一步骤开始）
7． 放进4℃台式离心机离心5分钟，速度为300g
8． 小心抽去上清液
9． 加入xx至xx微升裂解液（Reagent B），充分混匀（注意：可以调节蛋白浓度）
10． 转移到预冷的1.5毫升离心管
11． 强力涡旋震荡15秒
12． 置于冰槽里孵育30分钟
13． 放进4℃微型台式离心机离心5分钟，速度为16000g（或13000RPM，例如eppendorf 5415）
14． 小心移取100至500微升上清液到新的预冷的1.5毫升离心管
15． 移取10微升进行蛋白定量检测（注意：建议使用 Bradford蛋白质浓度定量试剂盒－GMS30030.1）
16． 即刻放进－70℃保存或置于冰槽里继续后续操作
二、 测定准备
1． 准备好待测样品（例如细胞裂解悬液等），置于冰槽里
2． 设定好分光光度仪（温度为30℃）：波长为340nm，间隔1分钟，读数6次（共5分钟），并置零
3． 缓冲液（Reagent C）室温下均衡温度
三、 背景对照测定
1． 移取xx微升缓冲液（Reagent C）到新的比色皿
2． 加入xx微升酶促液（Reagent D）
3． 加入xx微升反应液（Reagent E）
4． 加入xx微升底物液（Reagent F）
5． 放进30℃培养箱里静置3分钟
6． 加入xx微升阴性液（Reagent G）
7． 上下倾倒数次，混匀（限定在3秒之内）
8． 即刻放进分光光度仪检测，此为背景空对照：340波长读数0分钟 －340波长读数5分钟
四、 样品总活性测定
1． 移取xx微升缓冲液（Reagent C）到新的比色皿
2． 加入xx微升酶促液（Reagent D）
3． 加入xx微升反应液（Reagent E）
4． 加入xx微升底物液（Reagent F）
5． 放进30℃培养箱里静置3分钟
6． 加入10微升待测样品（注意：100微克细胞裂解蛋白；样品须溶解）
7． 上下倾倒数次，混匀（限定在3秒之内）
8． 即刻放进分光光度仪检测，此为样品总活性读数：340波长读数0分钟 －340波长读数5分钟
五、 样品非特异活性测定
检测开始前，移取xx微升缓冲液（Reagent C）到1.5毫升离心管，分别加入xx微升专性液（Reagent H）和待测样品（注意：100微克细胞裂解蛋白），混匀后，放进30℃培养箱里孵育30分钟。然后继续下列操作。
1． 移取xx微升缓冲液（Reagent C）到新的比色皿
2． 加入xx微升酶促液（Reagent D）
3． 加入xx微升反应液（Reagent E）
4． 加入xx微升底物液（Reagent F）
5． 放进30℃培养箱里静置3分钟
6． 加入40微升上述预处理的待测样品
7． 上下倾倒数次，混匀（限定在3秒之内）
8． 即刻放进分光光度仪检测，此为样品非特异活性读数：340波长读数0分钟 －340波长读数5分钟
六、 计算样品活性
1） 样品总活性和非特异活性计算
2）样品特异活性计算
六、酶标仪测定
1）样品总活性测定
1． 在96孔板上做好相应标记：背景对照和样品
2． 分别移取xx微升缓冲液（Reagent C）到96孔板里
3． 分别加入xx微升酶促液（Reagent D）
4． 分别加入xx微升反应液（Reagent E）
5． 分别加入xx微升底物液（Reagent F）
6． 轻轻摇动96孔板
7． 在30℃温度下孵育3分钟
8． 分别加入xx微升阴性液（Reagent G）或待测样品（100微克细胞裂解悬液蛋白）到相应孔里（注意：样品须清澈）
9． 轻轻摇动96孔板
10． 即刻放进酶标仪检测：0分钟读数和5分钟读数
11． 活性计算：
2） 样品非特异活性测定
检测开始前，移取xx微升缓冲液（Reagent C）到1.5毫升离心管，分别加入xx微升专性液（Reagent H）和待测样品（注意：100微克细胞裂解蛋白），混匀后，放进30℃培养箱里孵育30分钟。然后继续下列操作。
1． 在96孔板上做好相应标记：待测样品
2． 移取xx微升缓冲液（Reagent C）到96孔板里
3． 加入xx微升酶促液（Reagent D）
4． 加入xx微升反应液（Reagent E）
5． 加入xx微升底物液（Reagent F）
6． 轻轻摇动96孔板
7． 在30℃温度下孵育3分钟
8． 加入40微升上述预处理的待测样品
9． 轻轻摇动96孔板
10． 即刻放进酶标仪检测：0分钟读数和5分钟读数
11． 活性计算：
3） 样品特异活性计算
七、抑制剂筛选
1． 在96孔板上做好相应标记：背景、活性和待测抑制剂样品
2． 按下表加入试剂，进行样品预处理
内容物 | 空背景对照 | 样本背景 | 酶活性 | 待测抑制剂酶活性 |
缓冲液（Reagent C） | xx微升 | xx微升 | xx微升 | xx微升 |
阴性液（Reagent G） | xx微升 | xx微升 | xx微升 | —— |
待测抑制剂 | —— | xx微升 | ―― | xx微升 |
用户自备的纯化酶 | —— | —— | xx微升（1毫单位） | xx微升（1毫单位） |
96孔板每孔总量 | 空背景对照孔 （40微升） | 样本背景孔 （40微升） | 活性孔 （40微升） | 待测抑制剂样品孔 （40微升） |
轻轻摇动96孔板，混匀，放进30℃培养箱里孵育30分钟。然后进行下列操作 | ||||
3． 分别移取xx微升缓冲液（Reagent C）到新的96孔板的所有孔里
4． 分别加入xx微升酶促液（Reagent D）
5． 分别加入xx微升反应液（Reagent E）
6． 分别加入xx微升底物液（Reagent F）
7． 轻轻摇动96孔板
8． 在30℃温度下孵育3分钟
9． 加入40微升上述预处理的待测样品
10． 即刻放进30℃酶标仪检测：测读30分钟
11． 抑制活性计算
注意事项
1． 本产品为20次操作
2． 操作时，须戴手套
3． 系统操作过程中，背景测定只需1次
4． 样品处理忌用磷酸缓冲溶液
5． 样品须澄清，至关重要
6． 加入样品启动反应后3秒内即刻光度测定
7． 建议使用比色皿测定
8． 测定值由高到低变化；测定可持续30分钟
9． 光度测定后，比色皿须清洗
10． 样本测定0分钟读数高于5分钟读数表明具有酶活性
11． 样本测定读数持续上升，表明酶活过低或样品量过低
12． 非特异活性高于总活性，表明特异性酶活过低或样品量过低
13． 建议待测样本蛋白浓度为100微克/10微升（本公司提供 Bradford蛋白质浓度定量试剂盒－GMS30030.1）
14． 如果待测样品浓度过高或过低，可以调整样品浓度
15． SGK1激酶活性单位浓度定义：在30℃温度下，pH 7.5条件下，每分钟内能够氧化1微摩尔还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸（NADH）所需的酶量作为一个活性单位
16． 本公司提供系列蛋白激酶检测试剂产品
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